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當前位置:首頁新聞資訊ELISA試劑盒靈敏度偏低、重復性較差問題的探討

ELISA試劑盒靈敏度偏低、重復性較差問題的探討

更新時間:2019-11-22點擊次數:1865
   ELISA試劑盒的使用非常便捷這是眾所*的,但同時也有一些特殊因素時刻影響試驗的正常結果。較為常出現的問題是顯色淡,靈敏度偏低、重復性不佳、假陽性結果和假陰性結果,不管出現什么樣的結果,不但浪費客戶的金錢、樣本、精力,更重要的是對臨床做出了危險判斷。
  一、顯色淡,靈敏度偏低
  1.試劑盒在運輸途中時間太長,溫度太高;所以盡量縮短運輸時間,夏季應放冰塊降溫。
  2.培養箱溫度不足37℃,應注意培養箱溫度,放入反應板后盡量減少開啟次數以免影響溫度恒定,非隔水式培養箱尤其應注意。
  3.試劑盒未充分平衡;所以試劑盒從2~8℃冰箱取出后打開盒蓋,于室溫平衡至少20分鐘,確保所有試劑已平衡至室溫(約25℃)。
  4.保溫時間不足;所以做實驗時一定注意時間的重要性,如果怕忘了時間,可以校正定時鐘準確定時。
  5.洗滌時沖擊力太大、浸泡時間過長、洗滌次數增加;按說明書要求保留洗滌時間,準確記住洗滌次數。
  6.移液器吸液量不足,吸嘴內壁掛水太多或內壁不清潔;所以保證校正移液器,吸嘴要配套,裝吸嘴時要緊密,吸嘴內壁要清潔,一次性使用。
  7.蒸餾水水質有問題,要使用新鮮合格的蒸餾水。
  二、假陽性結果和假陰性結果
  1、標本的采集與保存
    1)當標本采集保存不當產生溶血時,紅細胞中的血紅蛋白釋放到血清中,血紅蛋白具有過氧化物酶的性質,其通過吸附或“PP效應”(蛋白質間相互吸附的現象)結合后,可催化A、B液顯色而造成假陽性
    2)反復凍融血清會使抗體效價跌落,所以測抗體的血清標本如需保存做多次檢測,宜少量分裝凍存。
    3)標本采集保存不當致細菌污染,菌體中可能含有內源性HRP,會產生假陽性反應;標本在冰箱中保存時間過長導致血清IgG聚合,易使間接法的試驗本底加深。因此,標本宜在新鮮時檢測。
  2.加樣
    1)如果樣品稀釋液少加或血清多加,都會引起本底增高。對于間接法來說,受上述兩個因素影響更大。因為血清中受檢的特異性IgG只占IgG中的一小部分。IgG的吸附性很強,非特異性IgG可直接吸附到固相載體上,有時也可吸附到包被抗原的表面。這些非特異性的IgG均可以和酶標二抗發生反應而造成較高陰性本底或假陽性。如果加入的血清過多,高于規定的稀釋倍數,極易造成高值陰性。反之,造成假陰性。
    2)如果加入的酶結合物過多或加在較高的孔壁上或孔口,也會引起本底升高或假陽性。
    3)如果血液未開始凝固或凝固不*時就強行離心分離血清,此時的血清中仍留部分纖維蛋白原,在ELISA測定過程中可以形成肉眼可見的纖維蛋白塊,易造成假陽性結果。
  3.溫育
    1)由于ELISA試驗在一定溫度下的反應時間并不是反應的終點,溫育時間過短、溫度過低,易致顯色不全;溫育時間過長、溫度過高,易致非特異性結合緊附于反應孔周圍,難以清洗*,產生陰性高值或假陽性反應。因此,要嚴格按規定的溫度和溫育時間進行。
    2)由于水浴較難將溫度控制在穩定的范圍,因此我們每次試驗時應認真觀察水浴箱的溫度,盡量少開啟水浴箱門,嚴格控制水浴的溫度為37±0.5。同時,微孔板不可重疊放置,以保證傳熱均勻,各板的溫度都能迅速達到平衡。
    3)由于試劑盒通常設定的反應溫度為37度,在這個溫度下溫育一定時間,蒸發的水分會很多,對于整個反應體系來講,各種反應物的濃度會不斷地增加,這樣必會導致反應*后的值升高。因此溫育時應貼上封板膠。
  4.洗板
  洗板在ELISA過程中雖不是一個反應步驟,但卻是決定試驗成敗的關鍵。ELISA就是靠洗板來達到分離游離的和結合的酶標記物的目的,通過洗板以清除殘留在板孔中沒能與固相抗原或抗體結合的物質,以及在反應過程中非特異性地吸附于固相載體的干擾物質。聚苯乙烯等塑料對蛋白質的吸附是普遍性的,而在洗板時應把這種非特異性吸附的干擾物質洗滌下來。在ELISA操作中,洗滌是*主要的關鍵技術,應嚴格按要求洗滌。洗板如不*,有酶結合物的非特異性吸附,將使空白值升高。另外,在間接法中如血清標本內的非特異性IgG吸附在固相上而未被洗凈,也將與酶標記抗體作用而產生干擾。
    1)各廠家的洗液是根據各自試劑的條件配制的,因此采用不配套的洗液常會得到不正常的反應結果,包括本底升高,所以不同廠家的洗液不應混用。
    2)洗液應按規定的倍數稀釋使用。試劑盒提供的洗液是濃縮的,過多稀釋洗液,會影響洗液的效果,而使反應的本底升高。反之造成假陰性。
    3)稀釋洗液的水應該是新鮮的蒸餾水,電導率小于1.5us/cm。如果水中含有過多的鈣、鎂離子,這些離子會占用表面活性劑,使試驗本底增高。
  三、重復性較差,經常有客戶反饋說做了兩個復孔值相差太大。可能的問題有:
    1.保溫時間不一致,洗滌條件不一致,操作人員不一致;重復測定標本,操作條件、人員等應盡可能與上次保持一致,以排除這些因素造成的不一致的可能性。
    2.樣品數量多少不一,加樣時間有長有短;所以重復某一樣品時,加樣時間盡可能接近。
    3.加樣量不一致;樣品稀釋前應充分混勻,盡可能使用同一移液器并裝緊吸嘴。
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